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目的制备Cre重组酶调控的卵清蛋白（OVA）-HBs Ag转基因小鼠,为乙肝的防治提供更好的动物模型。方法采用原核显微注射方法将线性化的携带OVA-HBs Ag基因并带有Lox P位点的质粒注入C57BL/6J×DBA小鼠受精卵的雄原核内,制备受Cre重组酶调控表达的OVA-HBs Ag转基因小鼠。将F1代OVA-HBs Ag阳性母鼠与本室饲育的Alb-Cre转基因阳性公鼠进行杂交,获得子代小鼠,观察Cre对OVA-HBs Ag转基因小鼠HBs Ag的诱导表达情况。采用PCR、ELISA和免疫组化方法检测HBs Ag基因、Cre基因在转基因小鼠体内的整合及表达情况。结果共注射受精卵491枚,成活337枚,成活率68.6%。产下F0代小鼠29只,其中PCR阳性4只,外源基因整合率13.8%。目前已传至F4代,F1-F4代PCR阳性率分别为27.5%、32.0%、22.9%、25.0%,ELISA法未检测到血清中HBs Ag表达。将F1代OVA-HBs Ag阳性母鼠与Alb-Cre阳性公鼠杂交,获得16只子代小鼠,PCR检测Cre基因和HBs Ag基因双阳性的子代小鼠有6只,其中2只小鼠血清HBs Ag检测为阳性,诱导表达阳性率为33.3%。结论成功制备出OVA-HBs A转基因小鼠,且可稳定传代,Cre重组酶可以诱导小鼠体内HBs Ag的表达。

目的研究雌激素对APP/PS1双转基因小鼠脑内老年斑及自噬的影响,探讨雌激素缺乏导致阿尔茨海默病（AD）的病理机制。方法将3月龄雌性APP/PS1双转基因AD模型小鼠分为卵巢切除组与假手术组,术后2个月采用免疫组化染色及透射电镜观察两组小鼠脑内老年斑及自噬功能的变化,同时检测自噬相关蛋白LC3、Beclin-1的表达情况。结果免疫组化结果显示,与假手术组相比,卵巢切除组小鼠脑内老年斑显著增加,分布更广,自噬相关蛋白LC3、Beclin-1阳性神经元数量均显著下降。电镜观察可见,与假手术组相比,卵巢切除组小鼠海马神经元及突起肿胀明显,暗神经元增加,神经元突起周围自噬小泡显著增多。结论雌激素缺乏可导致自噬泡成熟受阻、活性降低、自噬功能减弱,从而导致AD病理改变加重。

目的研究抗乙肝病毒新药Bay41-4109在HBV转基因小鼠体内的药效学作用。方法 SPF级TgM（HBV D1.3）小鼠分为Bay41-4109组[30mg/（kg.d）],拉米夫定组[30mg/（kg.d）]和溶媒组（0.5%羧甲基纤维素钠）3组,每组32只。利用免疫组化分析HBV转基因小鼠肝组织HBcAg变化,定量PCR技术研究HBV转基因小鼠肝组织HBV DNA及血清HBV DNA的变化,并从血清转氨酶及体重指标分析该药物体内作用的安全性。结果给药第50天,Bay41-4109组HBcAg阳性细胞核个数、阳性细胞核平均面积、光密度比值三项指标均明显低于溶媒组（P〈0.05）;用药第64天（停药2周）,各组间上述三项指标均无统计学差异。拉米夫定组各时间点上述指标与溶媒组之间均无明显差异（P〉0.05）。但Bay41-4109对肝组织及血清HBV DNA未见明显作用。该药未对HBV转基因小鼠血清转氨酶及体重产生明显影响。结论 Bay41-4109可有效抑制HBV转基因小鼠肝组织HBcAg表达,且效果优于拉米夫定。Bay41-4109是一种安全性较好的抗乙肝新药,其作用机制不同于拉米夫定。

目的建立YMDD耐药突变株HBV转基因小鼠,为乙肝防治研究提供转基因动物模型。方法采用受精卵显微注射法,将带有YMDD突变的对拉米夫定有耐药性的1.3拷贝HBV基因注入FVB/N单细胞受精卵的原核内,制备YMDD耐药突变株HBV转基因小鼠。采用PCR检测外源基因的整合和传代情况,采用ELISA和免疫组化等方法检测HBsAg在肝、肾中的复制和表达情况。结果注射受精卵3401枚,产269只F0代仔鼠,PCR阳性33只,外源基因的整合率12.3%。9只转基因鼠血清HBVDNA弱阳性,拷贝数低于103拷贝/ml;免疫组化结果显示肝组织和肾组织均有HBsAg表达,且肾组织中的表达强于肝组织。经传代产下47只F1代转基因鼠,目的基因PCR阳性率为27.6%,且肝组织和肾组织中HBsAg均有表达,分布特性与F0代一致。结论成功制备出体内有复制表达而且可以传代YMDD耐药突变株HBV的转基因小鼠。

目的研究HBV基因整合对转基因小鼠代谢和血液指标的影响。方法以28只同一窝乙肝表面抗原（HBsAg）阴性小鼠和50只HBsAg阳性的HBV转基因小鼠为研究对象,鼠龄6~8周,眼眶静脉丛采血,检测血液常规指标白细胞（WBC）、红细胞（RBC）、血红蛋白（Hb）、血小板（PLT）及淋巴细胞百分比（L%）、中间细胞百分比（M%）、分叶细胞百分比（G%）,血液生化指标葡萄糖（GLU）、尿素氮（BUN）、肌酐（CREA）、总蛋白（ALB）、白蛋白（ALB）、总胆红素（TBIL）、谷丙转氨酶（ALT）、谷草转氨酶（AST）、总胆固醇（CHOL）、甘油三酯（TG）等,并对有差异的指标进行品种（HBsAg阳性鼠和阴性鼠）内及性别间比较分析。结果转基因小鼠血糖、尿素氮、肌酐、红细胞、血红蛋白、血小板指标与正常小鼠之间有显著差异（P〈0.05）,而其余指标无明显差异（P〉0.05）。上述6项指标在不同性别正常小鼠之间没有差异,而在不同性别转基因小鼠之间仅血糖存在差异,雄鼠血糖高于雌鼠（P〈0.05）。转基因雄鼠血糖、肌酐、尿素氮明显高于正常雄鼠,而转基因雌鼠红细胞、血红蛋白、血小板指标明显高于正常雌鼠（P〈0.05）。结论 HBVDNA对小鼠的生理生化指标有一定影响。

目的制备1.3拷贝C基因型HBV转基因小鼠,为乙肝的防治提供较好的动物模型。方法采用受精卵显微注射法,制备1.3拷贝C基因型HBV转基因小鼠;采用PCR、ELISA、荧光定量PCR和免疫组化方法检测HBV基因在转基因小鼠体内的整合、复制和表达情况。结果共注射受精卵2282枚,成活2024枚,注射成活率88.7%。共移植假孕雌鼠72只,59只怀孕,假孕雌鼠妊娠率81.9%。共产下F0代小鼠185只,PCR检测共有19只整合阳性,阳性率10.3%。血清荧光定量PCR结果显示,其中6只小鼠有HBV DNA复制,拷贝数为102~103拷贝/ml;经传代产下F1代小鼠96只,PCR检测HBV DNA阳性33只,阳性率34.4%。血清荧光定量PCR结果显示,其中10只小鼠有HBV DNA复制,拷贝数为102~103拷贝/ml;F0代和F1代小鼠随机分别各取3只进行肝脏和肾脏HBsAg免疫组化检测结果均为阳性,且肾脏表达高于肝脏。结论 1.3拷贝C基因可以在上述制备成功的C型HBV转基因小鼠体内复制和表达,并且可以遗传给下一代。

目的建立稳定、高灵敏度化学发光Southern blotting检测系统,检测HBV（ayw）转基因小鼠肝脏及其他组织的HBV复制水平。方法采用地高辛标记HBV探针,利用pTHBV1047质粒检测杂交系统的灵敏度及重复性;提取第27代HBV（ayw）转基因小鼠肝、肾、脾和肌肉组织总DNA,经HindⅢ酶切后电泳、转膜,利用高灵敏度化学发光杂交Southern blotting检测各组织中HBV复制中间体的水平。结果地高辛标记的化学发光检测系统灵敏度达0.1pg,且杂交系统稳定可靠。HBV（ayw）转基因小鼠基因组DNA中检测到整合的外源HBV DNA,但低于HepG2.2.15细胞的HBV复制水平。肝、肾、脾和肌肉组织中都有HBV复制中间体存在,以肝组织中含量最高。结论第27代HBV（ayw）转基因小鼠染色体含有稳定的HBV基因整合,为复制型HBV转基因小鼠。

目的以携带绿色荧光蛋白（GFP）的慢病毒为载体制备转基因小鼠,建立慢病毒介导的转基因动物制备技术平台。方法将慢病毒表达载体FUGW与ViraPowerTMLentiviral Packaging Mix按1∶2比例混合,用LipofectamineTM2000转染293FT细胞,包装出的病毒经浓缩后以293T细胞测定病毒滴度。采用受精卵卵周隙显微注射的方式制备转基因小鼠。出生小鼠用PCR法检测GFP基因整合情况,并在荧光体视显微镜下鉴定外源基因的表达情况。结果病毒包装过程中,转染后24h即可见GFP表达,72h时293FT细胞的转染效率达95%以上,镜下可见大量绿色荧光。包装出的慢病毒滴度为106U/ml,经浓缩后可达108U/ml。PCR检测显示,F0代小鼠GFP PCR阳性率为70.27%（26/37）。荧光体视显微镜下观察荧光小鼠所占比例,F0代为65.2%（15/23）,F1代为55.0%（11/20）,荧光强度在两代个体中相当。F0代、F1代中GFP均呈广泛表达。结论制备出携带GFP可传代的转基因小鼠,建立了慢病毒载体介导的转基因小鼠制备技术平台。

尽管有了有效的疫苗,但乙肝病毒（HBV）感染依然是全球性公共卫生问题,在我国形势尤为严峻。由于HBV的自然宿主仅限于人和黑猩猩,现有的模型都有不同的缺陷,因此关于其生物学及治疗方法研究的诸多问题依然没有解决。复制型HBV转基因小鼠模型的建立,极大地提高了我们对HBV生活史、免疫生物学和肝脏病变的免疫发病机制的认识。本文简要介绍国际上由Francis V.Chisari实验室和国内由本实验室建立的复制型HBV转基因小鼠,以及利用该模型开展抗病毒药物和乙肝发病机制的研究工作。

目的探讨微环DNA载体介导的shRNA对HBV转基因小鼠体内乙肝病毒复制及表达的抑制效应。方法采用分子克隆技术制备靶向HBV基因的shRNA通用质粒p U6-shRNA HBV和微环shRNA质粒p MC-U6-shRNA HBV。将HBV转基因小鼠随机分为微环shRNA组、通用质粒shRNA组和无关质粒对照组,利用水动力转染技术分别导入p MCU6-shRNA HBV、p U6-shRNA HBV及对照载体p U6-control。于转染后第1、7、14、21、28、35天,分别采用Real-time PCR及化学发光微粒子免疫分析法（CMIA）检测转基因小鼠血清HBV DNA及HBs Ag水平,免疫组化染色观察转基因小鼠肝脏HBc Ag的表达。结果质粒注射后第7~21天,p U6-shRNA HBV及p MC-U6-shRNA HBV对转基因小鼠血清HBs Ag的表达及HBV DNA的复制均有明显抑制作用,与p U6-control相比差异有统计学意义（P〈0.05）;21d后p U6-shRNA HBV组血清HBs Ag及HBV DNA均有所回升,至第35天基本回复至对照水平;至注射后35d,p MC-U6-shRNA HBV依然保持较强的体内抑制作用,与其他两组比较差异有统计学意义（P〈0.05）。免疫组化结果显示,与p U6-shRNA HBV组相比,p MC-U6-shRNA HBV组小鼠肝组织内HBc Ag阳性细胞数明显减少。结论与p U6-shRNA HBV质粒相比,微环shRNA质粒p MC-U6-shRNA HBV对HBV转基因小鼠体内乙肝病毒的抑制作用持续时间更长久。采用微环DNA作为shRNA的体内递送载体与普通的质粒载体相比具有一定优势。